CONTACT

Jean-Jacques DIAZ
Chef d'équipe
jean-jacques.diaz@lyon.unicancer.fr
04 78 78 28 19

Cheney A - 4ème étage
Centre Léon Bérard
DIAZ Jean-Jacques
Team Leader
Research Director (INSERM)
Phone : 04 78 78 28 19
SAURIN Jean-Christophe
PU-PH (HCL)
Phone : 04 72 11 03 69
MERTANI Hichem

Associate Professor (UCBL)
hichem.mertani@lyon.unicancer.fr
04 78 78 28 19

CATEZ Frédéric

Research Scientist (CNRS)
frederic.catez@lyon.unicancer.fr
Téléphone : 04 26 55 68 43

MARCEL Virginie

Research Scientist  (Inserm)
virginie.marcel@lyon.unicancer.fr
Téléphone : 04 26 55 68 43

BOUVET Philippe

Professor (ENS-Lyon)
philippe.bouvet@ens-lyon.fr
Phone : +33 (0)4 69 85 60 91 

MONGELARD Fabien

Associate Professor (ENS-Lyon)
fabien.mongelard@ens-lyon.fr
Phone : +33 (0)4 69 85 60 91

DALLA VENEZIA Nicole
Research Scientist  (CNRS)
nicole.dalla-venezia@lyon.unicancer.fr

Phone : 04 26 55 67 45

VINCENT Anne
Research Scientist  (CNRS)
anne.vincent@lyon.unicancer.fr

Phone : 04 26 55 67 45

MONIER Karine

Engineer (CNRS)
karine.monier@lyon.unicancer.fr
Phone : 04 26 55 67 45

DELAGE Hélène

Assistant Engineer (CNRS)
helene.delage@lyon.unicancer.fr
Phone:  +33 (0)4 69 85 60 93

LO MONACO Piero

Post-Doctoral fellow (ANR)
piero.lomonaco@lyon.unicancer.fr
Phone : +33 (0)4 26 55 67 83

CRUZ Elizabhet
PhD Student (ENS - CONACyT)
Elizabeth.CRUZGOMEZ@lyon.unicancer.fr

Phone : 04 26 55 68 43

MALET Lucie
PhD Student (UCBL - Fondation pour la Recherche Médicale)
lucie.malet@lyon.unicancer.fr
CHALABI Mounira

Post-Doctoral fellow (ANR)
Mounira.CHALABI@lyon.unicancer.fr

GAUCHEROT Angéline
Engineer (ITMO - Inserm)
angeline.gaucherot@lyon.unicancer.fr
HULEUX Anthéa
Assistant Engineer (ANR)
anthea.huleux@lyon.unicancer.fr
MONCHIET Déborah
Assistant Engineer  (UCBL)
Deborah.MONCHIET@lyon.unicancer.fr
MOURKSI Nour El Houda
NAIT SLIMANE Sophie
PARAQINDES Hermes
Voir les objectifs et projets Voir les publications

PRINCIPALES COLLABORATIONS


Internationales

Jonathan Yewdell – NIH, Bethesda, MD. USA

Xian Chen – University of North Carolina, NC. USA

Christine Lovly – Vanderbilt University, Nashville, TN. USA

Davide Ruggero – UCSF, San Francisco, CA. USA

Allastair Thompson and Jean-Christophe Bourdon - Ninewells Hospital & Medical School. Dundee, Scotland

Jean-Christophe Marine – VIB, Gent. Belgium

Denis Lafontaine – Université Libre de Bruxelles, Brussels. Belgium

Alberto Inga – University of Trento, Trento. Italy

Marjan Askarian-Amiri – University of Auckland, Aucland. New Zealand

Dariusz Wołowiec - Department of Hematology - Pologne

Duncan Smith - Mahidol University, Nakon Pathom. Thailand

Masoud Mehrgardi - University of Isfahan, Isfahan, Iran


Nationales

Alain Puisieux – Institut Curie, Paris. France

Olivier NAMY - Université Paris Sud - Orsay, France

Fabrice André – Institut Gustave Roussy, Villejuif. France

Bruno Klaholtz – IGBMC, Strasbourg. France

Marat Yusupov – IGBMC, Strasbourg. France

Anne-Catherine Prats – Université de Toulouse, Toulouse. France

Fatima Mechta-Grigoriou – Institut Curie, Paris. France

Hughe de Thé – Hôpital Saint-Louis, Paris. France

Jean Soulier – Hôpital Saint-Louis, Paris. France

Raphaël Rodriguez – Institut Curie, Paris. France

Alexandre David – IGF, Montpellier. France

Julie Pannequin – IGF, Montpellier. France

Eric Rivals – LIRMM, Montpellier. France

Iouri MOTORIN – Université de Lorraine, Nancy, France

Bruno LINA – Université de Lyon, Lyon, France

Philippe Clézardin – LyOS, Lyon. France

Ambra Mari – Institut NeuroMyogène, Lyon. France

Reynald Gillet - Université de Rennes


CRCL / Centre Léon Bérard

Patrick Mehlen

Charles Dumontet 

Pierre Saintigny

Véronique Maguer-Satta

Marc Billaud and Pierre Sujobert

Marie Castets and Jean-Yves Blay

Mathieu Gabut

Pierre-Etienne Heudel

Philippe Cassier

Thomas Bachelot

Alain Viari

David Pérol


SOUTIENS FINANCIERS

ANR
INCa
ITMO Cancer / Plan Cancer 2014-2019
CNRS

INSERM

CLARA
La Ligue Nationale Contre le Cancer
La Ligue Contre le Cancer, comités départementaux (Rhône, Drôme, Isère, Puy-de-Dôme, Allier, Sôane-et-Loire, Loire, Haute-Loire).
Fondation ARC

Fondation Synergie Lyon Cancer

OBJECTIFS

L'équipe Ribosome, Traduction et Cancer étudie le rôle émergent des ribosomes et de l'hétérogénéité des ribosomes dans le développement du cancer. Nous recherchons les altérations des ribosomes et de la machinerie de production des ribosomes qui caractérisent les cancers, avec deux objectifs : premièrement, mieux comprendre le processus de développement des tumeurs et deuxièmement, appliquer ces connaissances à l'identification de nouveaux biomarqueurs, au développement de nouvelles stratégies thérapeutiques pour traiter le cancer et à la compréhension de la réponse aux chimiothérapies. Nous nous focalisons sur les pathologies liées aux cancers du sein, du colon, du poumon et du pancréas.

PROJETS

Biogenèse des ribosomes et cancer
Notre groupe s'intéresse depuis longtemps aux dérégulations de la biogenèse des ribosomes qui sont associées aux pathologies et en particulier au développement tumoral et à la chimiorésistance. La biogenèse des ribosomes est un processus fondamental complexe assurant la production des ribosomes, les complexes ribonucléoprotéiques qui effectuent toutes les synthèses protéiques de la cellule. Récemment, il est apparu que tous les ribosomes d'une cellule ne sont pas identiques et que la composition d'un ribosome peut avoir un impact sur l'activité de traduction, y compris le contrôle de la qualité de la synthèse protéique.
Il est bien connu que la biogenèse des ribosomes est suractivée dans les cellules cancéreuses, pour faire face à l'augmentation de leur métabolisme et de leur prolifération. En conséquence, la morphologie des nucléoles (les domaines nucléaires où se déroule la biogénèse des ribosomes) est fortement modifiée dans les cellules cancéreuses, et constitue l'une des caractéristiques les plus distinctives des cellules tumorales. Des études génétiques menées sur divers modèles animaux ont montré que la modification de la biogenèse des ribosomes, et par conséquent de leur composition, pouvait avoir un effet bénéfique sur la survie cellulaire et donc sur le développement du cancer. Notre groupe a montré que dans les cancers, la production de ribosomes est altérée, résultant en des ribosomes de compositions distinctes, et en particulier que la méthylation des ARN ribosomiques (ARNr) est modifiée (Belin. S et al., PLoS ONE (2009) ; Marcel, V. et al., Cancer Cell (2013) ; Erales, J. et al. PNAS (2017)).

 

Structure 3D d'un ribosome de S. Cerevisiae à 3,0 Å. Grande sous-unité : ARNr en bleu, protéines en noir. Petite sous-unité : ARNr en orange, protéines en gris.

© Gabriel Therizols. Reconstruction dans Pymol. Coordonnées selon Ben-Shem et al. Science 2011.

 

Rôle de la 2'-O-méthylation des ARN ribosomiques dans les cancers
La 2'-O-méthylation est la modification chimique la plus abondante des ARN ribosomiques (ARNr) avec 106 sites cartographiés dans les ribosomes humains. Plusieurs études, dont les nôtres, ont révélé que la 2'-O-méthylation contribue à l'activité de traduction du ribosome et a un impact sur la traduction des ARNm codant pour des protéines clés de la tumorigenèse (oncogènes, facteurs de survie...). Nous caractérisons actuellement la 2'-O-méthylation des ARN ribosomiques dans diverses pathologies et modèles de cancer pour explorer le potentiel de ces altérations dans la fonction des ribosomes et comme nouveaux biomarqueurs. Nous utilisons le RiboMeth-Seq, une nouvelle méthode basée sur le RNA-Seq qui fournit une cartographie exhaustive et quantitative de la 2'-O-méthylation dans tous les ARN ribosomiques (Erales, J. et al. PNAS (2017) ; Krogh, N. et al, NAR (2016)). 

Nos projets actuels comprennent l'étude du rôle des sites variables de 2'-O-méthylation sur la fonction des ribosomes, la régulation de la traduction et le phénotype cellulaire.

 ;

Gauche. Structure 3D d'un ribosome de cellule HeLa indiquant les sites de 2'-O-méthylation sites selon leur variabilité après ciblage de la méthyl-transférase Fibrillarine.
Droite. Carte de 2'-O-méthylation de l'ARN ribosomique 18S de cellules HeLa obtenue par RiboMethSeq.
Données et images tirées de Erales, J. et al. PNAS. 2017.

Rôle des gènes de la biogenèse des ribosomes Fibrillarine et Nucléoline dans la biologie du cancer
Il est établi depuis longtemps que la biogenèse des ribosomes est dérégulée dans les cancers, ce qui contribue à l'altération quantitative et qualitative de la population de ribosomes dans les cellules cancéreuses. Dans les cellules normales, la biogenèse des ribosomes est finement régulées par de nombreuses voies de signalisation pour répondre au besoin de la cellule saine. Dans les cellules tumorales, ces voies de signalisation sont très souvent altérées et correspondent préférentiellement aux voies oncogéniques et tumeur suppressives qui induisent une dérégulation de l’ARN Pol I et donc de la biogenèse des ribosomes. En revanche, nous ne savons pas comment les étapes de maturation et d'assemblage des ribosomes contribuent à la production de ribosomes spécifiques du cancer. La fibrillarine (FBL) et la nucléoline (NCL) sont deux des facteurs les plus importants de la biogenèse des ribosomes et contrôlent à la fois la quantité et la qualité de la population de ribosomes produits. La FBL est la 2'-O-méthyltransférase des ARNr, mais elle est également nécessaire au clivage des pré-ARNr en ARNr matures et stimule l'activité de l'ARN Pol I. La NCL est nécessaire à l'activité de l'ARN Pol I, à la maturation du pré-ARN et contribue à l'assemblage des ribosomes.
Nous explorons la contribution et les rôles mécanistiques de ces deux facteurs dans plusieurs pathologies, notamment le cancer du sein, la leucémie et les cancers du pancréas (Belin. S et al, PLoS ONE (2009) ; Marcel, V. et al, Cancer Cell (2013), Marcel, V. et al PLoS ONE (2017), Nguyen Van Long F, et al Cancers, (2018), Gilles, M et al. Cancer Res. 2016, Kabirian-Dehkordi S, et al Nanomédecine (2019)).

Hétérogénéité des ribosomes et chimiothérapie
Notre équipe explore comment la variabilité de composition des ribosomes contribue à la résistance et au mode d'action des thérapies non ciblées et ciblées, dans le cancer du colon et du poumon.
Nous nous sommes récemment concentrés sur le 5-Fluorouracil (5-FU), la thérapie anticancer la plus administrée dans le monde. Le 5-FU a d'abord été utilisé pour son activité anti-proliférative par le biais d'effets délétères sur l'ADN. Ce n'est que récemment que nous nous sommes intéressés à l'incorporation des métabolites du 5-FU dans les ARN cellulaires. Alors que l'incorporation du 5-FU dans l'ARN est jusqu'à 15 000 fois plus élevée que dans l'ADN, les conséquences sur le fonctionnement de l'ARN restent mal comprises. Cependant, nous avons montré que le 5-FU induit une reprogrammation de la traduction par un mécanisme moléculaire qui reste à élucider. Nous avons récemment caractérisé que le 5-FU altère la biogenèse des ribosomes et leur composition. Nous explorons comment ces modifications contribuent à la régulation de la traduction des cellules traitées et à leur phénotype.

Savoir-faire
Nous développons et exploitons un ensemble de technologies et méthodologies complémentaires pour décrire au niveau moléculaire et cellulaire chaque étape de la biogenèse des ribosomes à la fois dans des modèles cancéreux pertinents (lignées cellulaires, sphéroïdes, organoïdes, PDX) mais aussi et surtout à partir d’échantillons de patients.. Certaines sont des méthodologies conventionnelles de biochimie et de biologie cellulaire (microscopie, gènes rapporteurs, protéines marquées...), et d'autres sont des méthodologies dédiées telles que la purification des ribosomes et des nucléoles, le fractionnement des polysomes ou l'analyse de la 2'-O-méthylation de l'ARNr par RiboMethSeq. Nous collaborons avec plusieurs équipes ayant une expertise reconnue dans le "ribosome profiling", la spectrométrie de masse et l'analyse des ribosomes par CryoEM.

Opportunités pour rejoindre l'équipe. Si vous souhaitez rejoindre l'équipe, envoyez votre CV et une lettre de motivation à Jean-Jacques Diaz (jean-jacques.diaz@lyon.unicancer.fr).

PUBLICATIONS

2020

1.     W. Sornjai, F.N. Van Long, N. Pion, A. Pasquer, JC. Saurin, V. Marcel, JJ. Diaz, H.C. Mertani, D.R. Smith. Iron and hepcidin mediate human colorectal cancer cell growth. Chemico-Biological Interactions (2020), doi: https://doi.org/10.1016/j.cbi.2020.109021.

 

2019

1.     Wei J, Kishton RJ, Angel M, Conn CS, Dalla Venezia N, Marcel V, Vincent A, Catez F, …, Diaz JJ, Qian SB, Staudt LM, Restifo NP, Yewdell JW. Ribosomal Proteins  Regulate MHC Class I Peptide Generation for Immunosurveillance. Mol Cell. 2019 doi: 10.1016/j.molcel.2018.12.020. Epub 2019 Jan 31. PubMed PMID: 30712990.

2.     Margueritat J, Virgone-Carlotta A, Monnier S, Delanoë-Ayari H, Mertani HC, Berthelot A, Martinet Q, Dagany X, Rivière C, Rieu JP, Dehoux T. High-frequency mechanical properties of tumors measured by Brillouin Light scattering. Physical Rev Letters (2019). 1:018101. doi: 10.1103

3.     Gueiderikh A, Rouvet G, Souquère-Besse S, Apcher S, Diaz JJ* and Rosselli F*. Fanconi anemia proteins are required to maintain nucleolar homeostasis. BioRxiv doi: https://doi.org/10.1101/509950. *Co-last authors

4.     Kabirian-Dehkordi S, Chalabi-Dchar M, Mertani HC, Le Guellec D, Verrier B, Diaz JJ, Mehrgardi MA and Bouvet P. AS1411-conjugated gold nanoparticles affect cell proliferation through a mechanism that seems independent of nucleolin. Nanomedicine: NBM, 21:102060 (2019)

5.     Provost A, Rousset C, Bourdon L, Mezhoud S, Reungoat E, Fourneaux C, Bresson T, Pauly M, Beard N, Possi-Tchouanlong L, Grigorov B, Bouvet P, Diaz JJ, Chamot C, Pecheur EI, Ladaviere C, Charreyre MT, Favier A, Place C, Monier K. Innovative particle standards and long-lived imaging for 2D and 3D dSTORM. Scientific Reports, 9:17967 (2019)

6.     Ussowicz M, Marcel V, Long FNV, Kazanowska B, Diaz JJ*, Wołowiec D*. Analysis of the rRNA methylation complex components in pediatric B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia: A pilot study. Adv Clin Exp Med. 2020 Jan;29(1):107-113. doi: 10.17219/acem/112608. Co-last authors

7.     Wu N, Nguyen XN, Wang L, Appourchaux R, Zhang C, Panthu B, Gruffat H, Journo C, Alais S, Qin J, Zhang N, Tartour K, Catez F, Mahieux R, Ohlmann T, Liu M, Du B, Cimarelli A. The interferon stimulated gene 20 protein (ISG20) is an innate defense antiviral factor that discriminates self versus non-self translation. PLoS Pathog. 2019 Oct 10;15(10):e1008093. doi: 10.1371/journal.ppat.1008093.

 

2018

1.     Gachet S, El-Chaar T, Avran D, Genescà E, Catez F, Quentin S, Delord M, Therizols G, Briot D, Meunier G, Hernandez L, Pla M, Smits WK, Buijs-Gladdines JG, Van Loocke W, Menschaert G, André-Schmutz I, Taghon T, Van Vlierberghe P, Meijerink JP, Baruchel A, Dombret H, Clappier E, Diaz JJ, Gazin C, de The H, Sigaux F and Soulier J. Deletion 6q drives T-cell leukemia progression by ribosome modulation. Cancer Discovery :pii : CD-17-0831 (2018) doi: 10.1158/2159-8290.CD-17-0831. Epub 2018 Sep 28. PubMed PMID: 30266814.

2.     Nguyen Van Long F, Lardy-Cleaud A, Bray S, Chabaud S, Dubois T, Diot A, Thompson AM, Bourdon JC, Perol D, Bouvet P, Diaz JJ*, Marcel V*. The druggable nucleolin identifies breast tumours associated with poor prognosis that exhibit different biological processes. Cancers (2018) 10, 390. *Co-last authors

3.     Albaret M, Vermot-Desroches C, Paré A, Roca-Martinez J-X, Malet L, Esseily J, Gerossier L, Brière J, Pion N, Marcel V, Catez F, …, Mertani HC, Saintigny P, Diaz JJ. Externalized Keratin 8: A Target at the Interface of Microenvironment and Intracellular Signaling in Colorectal Cancer Cells. Cancers (2018) 10, 452. doi: 10.3390/cancers10110452. PubMed PMID: 30453567; PubMed Central PMCID: PMC6266717.

4.     Lisowska J, Rödel CJ, Manet S, Miroshnikova YA, Boyault C, Planus E, De Mets R, Lee HH, Destaing O, Mertani HC, Boulday G, Tournier-Lasserve E, Balland M, Abdelilah-Seyfried S, Albiges-Rizo C, Faurobert E. Cerebral Cavernous Malformation 1/2 complex controls ROCK1 and ROCK2 complementary functions for endothelial integrity. J Cell Sci (2018). doi: 10.1242/jcs.216093.

5.     Duret D, Haftek-Terreau Z, Carretier M, Berki T, Ladavière C, Monier K, Bouvet P, Marvel J, Leverrier Y, Charreyre M-T and Favier A Labeling of native proteins with fluorescent RAFT polymer probes: application to the detection of a cell surface protein using flow cytometry. Polymer Chemistry (2018), DOI: 10.1039/c7py02064c, 9,1857.

6.     Dubois J, Traversier A, Julien T, Padey B, Lina B, Bourdon JC, Marcel V, Boivin G, Rosa-Calatrava M, Terrier O. The non-structural NS1 protein of influenza viruses modulates TP53 splicing through the host factor CPSF4. J Virol. 2019. doi: 10.1128/JVI.02168-18.

 

2017

1.     Erales J,, Belin S, Ghayad SE, Garcia M, Laforêts F, Marcel V, …, Therizols G, Yusupov M, Namy O, Ohlmann T, Motorin I, Catez F, Diaz JJ. Evidence for rRNA 2'-O-methylation plasticity: control of intrinsic translational capabilities of human ribosomes. PNAS (2017) vol 114(49):12934-12939. doi: 10.1073/pnas.1707674114. Epub 2017 Nov 20. PubMed PMID: 29158377; PubMed Central PMCID: PMC5724255.

2.     Bash-Imam Z, Therizols G, Vincent A, Lafôrets F, …, Pion N, …, Saurin JC, Mertani HC, Textoris J, Auboeuf D, Catez F, Dalla Venezia N, Dutertre M*, Marcel V*, Diaz JJ*. Translational reprogramming of colorectal cancer cells induced by 5-fluorouracil through a miRNA-dependent mechanism. Oncotarget (2017) vol 8(28), 46219-46233. *Co-last authors. doi: 10.18632/oncotarget.17597.

3.     Marjanovi MP, Hurtado-Bagès S, Lassi M, Valero V, Malinverni R, Delage H, Navarro M, Corujo D, Guberovic I, Douet J, Gama-Perez P, Garcia-Roves PM, Ahel I, Ladurner AG, Yanes O, Bouvet P, Suelves M, Teperino R, Pospisilik JA, Buschbeck M. MacroH2A1.1 regulates mitochondrial respiration by limiting nuclear NAD+ consumption. Nat Struct Mol Biol 24(11):902-910 (2017) doi: 10.1038/nsmb.3481. Epub 2017 Oct 9.

4.     Benech N, Walter T, Saurin JC. Desmoid Tumors and Celecoxib with Sorafenib. N Engl J Med. 2017 Jun 29;376(26):2595-2597.

5.     Bobrowicz M, …, Berthel E, Dalla Venezia N, …, Diaz JJ, … HDAC6 inhibition up-regulates CD20 levels and increases the efficacy of anti-CD20 monoclonal antibodies. Blood 2017 Oct 5;130(14):1628-1638. doi: 10.1182/blood-2016-08-736066.

6.     Sornjai W, Lithanatudom P, Erales J, Joly P, Francina A, Hacot S, Fucharoen S, Svasti S, Diaz JJ, Mertani HC*, Smith DR*. Hypermethylation of 28S ribosomal RNA in b-thalassemia trait carriers. Int J Biol Macromol 94, 728-734 (2017) *equal senior authors.

7.     Marcel V*, Catez F*, Berger CM, Perrial E, Plesa A, Thomas X, Mattei E, Hayette S, Saintigny P, Bouvet P, Diaz JJ*, Dumontet C*. Expression profiling of ribosome biogenesis factors reveals Nucleolin as a novel potential marker to predict outcome in AML patients. PLoS One (2017) vol 12(1), e0170160. *Co-last authors. doi:10.1371/journal.pone.0170160

8.     Moraleva A, Magoulas C, Polzikov M, Hacot S, Mertani HC, Diaz J.-J. & Zatsepina O. Involvement of the specific nucleolar protein SURF6 in regulation of proliferation and ribosome biogenesis in mouse NIH/3T3 fibroblasts, Cell Cycle, 16:20, 1979-1991 (2017) doi: 10.1080/15384101.2017.1371880

9.     Lallemand F, Petitalot A, Vacher S, De Koning L, Taouis K, Lopez BS, Zinn-Justin S, Dalla Venezia N, Chemlali W, Schnitzler A, Lidereau R, Bieche I, Caputo SM. Involvement of the FOXO6 transcriptional factor in breast carcinogenesis. Oncotarget 2017 Dec 30;9(7):7464-7475. doi: 10.18632/oncotarget.23779.

10.   Douet, J., Malinverni, R., Corujo, D., Renauld, J., Sansoni, V., Marianović, M., Cantariño, N., Valero, V., Mongelard, F., Bouvet, P., Imhof, A., Thiry, M. and M. Buschbeck.. MacroH2A histone variants have a major role in nuclear organization and maintain heterochromatin architecture by tethering repeats to Lamin B1. J. Cell Sci., (2017)130(9):1570-1582

11.   Wu M, Wei W, Chen J, Cong R, Shi T, Li J, Bouvet, P., Wong J, Du JX. . Acidic domains differentially read histone H3 lysine 4 methylation status and are widely present in chromatin-associated proteins. Sci China Life Sci. (2017), 60(2):138-151.

12.   Kumar, S., Cruz, E., Chalabi M. Rong, C., Das, S., Ugrinova, I., Monier, K.  Mongelard, F. and P. Bouvet,  Integrated analysis of mRNA and miRNA expression in HeLa cells expressing low levels of nucleolin. Scientific Reports, (2017), 7(1):9017

13.   Motaghi, H., Mehrgardi, M.A and P. Bouvet.  Carbon Dots-AS1411 Aptamer Nanoconjugate for Ultrasensitive Spectrofluorometric Detection of Cancer Cells. Scientific Reports, (2017), 7(1), 10513

14.   Posavec Marjanović, M., Teperino, R., Hurtado Bagès, S., Valero, V., Malinverni, R., Delage, H.., Navarro, M., Gamma, P., Garcia-Roves, P., Yanes, O., Bouvet, P., Suelves, M., Pospisilik, JA, and M. Buschbeck.  A splicing switch of the histone variant macroH2A1 couples the chromatin state to energy metabolism. Nat. Struct. Molec. Biol, (2017) 11, 902-910.

2016

1.     Terrier O, Carron C, De Chassey B, Dubois J, Traversier A, Julien T, Cartet G, Proust A, Hacot S, Ressnikoff D, Lotteau V, Lina B, Diaz JJ, Moulès V, and Rosa-Calatrava M. Nucleolin interacts with influenza A nucleoprotein and contributes to viral ribonucleoprotein complexes nuclear trafficking and efficient influenza viral replication. Sci Rep 6, 29006 (2016).

2.     Vouyovitch CM, Perry JK, Liu DX, Bezin L, Vilain E, Diaz JJ, Lobie PE, Mertani HC. WNT4 mediates the autocrine effects of growth hormone in mammary carcinoma cells. Endoc Relat Cancer 23, 571-585 (2016).

3.     Salvetti, A., Coute, Y., Epstein, A., Arata, L., Kraut, A., Navratil, V., Bouvet, P. and A. Greco. Functions of nuclear nucleolin through global proteomics and interactomic approaches. J of Proteomic Research, (2016), 15, 1659-1669.

4.     Gaume X., Place C., Delage H., Mongelard F., Monnier K*. and P. Bouvet*.  Nucleolin contributes to microtubule stabilization. Plos One, (2016), 11(6):e0157534. *Co-last authors

5.     Lacour W, Adjili S, Blaising J, Favier A, Monier K, Mezhoud S, Place C, Ladavière C, Pecheur EI, Charreyre MT. Far-red fluorescent lipid-polymer probes for an efficient labeling of enveloped viruses. Advanced Healthcare materials (2016), DOI 10.1002, April.26.

6.     Swaminathan, A., Delage, H., Chatterjee, S,  Dutron, L., Cassel, R., Martinez, N., Cosquer, B., Kumari, S., Mongelard, F., Lannes, B., Cassel, J.C., Boutillier, A.L., Bouvet, P., and T.K. Kundu. . Transcriptional Positive Coactivator 4 (PC4) is critical for brain plasticity. J. Biol Chem, (2016), 291(39):20303-14.

7.     Gilles, Maione , Cossutta , Carpentier , Caruana , Di Maria ,Houppe , Destouches , Shchors , Prochasson , Mongelard , Lamba , Bardelli , Bouvet , Couvelard , Courty , Giraudo. Nucleolin targeting impairs the progression of pancreatic cancer and promotes the normalization of tumor vasculature. Cancer Research, (2016), 76(24):7181-7193.

8.     Virgone-Carlotta A, Lemasson M, Mertani HC, Diaz J-J, Monnier S, Dehoux T, Delanoë-Ayaria H, Rivière C* and Rieu JP*. Indepth phenotypic characterization of multicellular tumor spheroids: Effects of 5-Fluorouracil. PLoS ONE 12(11): e0188100 (2017). doi.org/10.1371/ journal.pone.0188100

9.     Granzotto A, …, Vincent A, Dalla Venezia N, …. Influence of the nucleoshuttling of the ATM protein in the healthy tissues response to radiation therapy: toward a molecular classification of human radiosensitivity. Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 2016 Mar 1;94(3):450-60. doi: 10.1016/j.ijrobp.2015.11.013.

10.   Vincent A, Berthel E, Dacheux E, Magnard C, Dalla Venezia N. BRCA1 affects Protein Phosphatase 6 signalling through its interaction with ANKRD28. Biochem. J. 2016 Apr 1;473(7):949-60. doi: 10.1042/BJ20150797.

2015

1.     Adjili A, Favier A, Fargier G, Thomas A, Massin J, Monier K., Favard C, Vanbelle C, Andraud C, Muriaux D, Charreyre MT Biocompatible photoresistant far red emitting fluorescent probes with near-infrared two-photon absorption for labeling living cells, Biomaterials (2015) doi: 10.1016/j.biomaterials.2014.12.026, Apr;46:70-81.

2.     Gaume, X., Tassin, A.M., Ugrinova, I., Mongelard, F., Monier, K*. and P. Bouvet*. Centrosomal nucleolin is required for microtubule network organization. Cell Cycle, 2015, 14(6):902-19. *Co-last authors

3.     De Laplanche E, Boudria A, Dacheux E, Vincent A, Gadot N, Assade F, Le Corf K, Leroy X, Mège-Lechevalier F, Eymin B, Dalla Venezia N, Simonnet H. Low glucose microenvironment of normal kidney cells stabilizes a subset of messengers involved in angiogenesis. Physiol. Rep. 2015 Jan 19;3(1). pii: e12253. doi: 10.14814/phy2.12253.

4.     Joly MO, Attignon V, Saurin JC, Desseigne F, Leroux D, Martin-Denavit T, Giraud S, Bonnet-Dupeyron MN, Faivre L, Auclair J, Grand-Masson C, Audoynaud C, Wang Q. Somatic MMR Gene Mutations as a Cause for MSI-H Sebaceous Neoplasms in Muir-Torre Syndrome-Like Patients. Hum Mutat. 2015 Mar;36(3):292-5.

5.     Marchalot J, Chateaux JF, Faivre M, Mertani HC, Ferrigno R, Deman AL. Dielectrophoretic capture of low abundance cell population using thick electrodes. Biomicrofluidics. (2015) ;9:054104.

 

2014

1.     Cong, R., Das, S., Douet, J., Wong, J., Buschbeck, M., Mongelard, F. and P. Bouvet . macroH2A1 histone variant represses rDNA transcription. Nucleic Acids Research, 2014, 42, 181-192.

2.     Sagne C, Marcel V, Bota M, Martel-Planche G, …, Perriaud L, Boniol M, Vagner S, Cox DG, Chan CS, Mergny JL, Olivier M, Ashton-Prolla P, Hall J, Hainaut P, Achatz MI. Age at cancer onset in germline TP53 mutation carriers: association with polymorphisms in predicted G-quadruplex structures. Carcinogenesis (2014) vol 35(4), 807-815.

3.     Couderc C, Bollard J, Couté Y, Massoma P, Poncet G, Lepinasse F, Hervieu V, Gadot N, Sanchez JC,Scoazec JY, Diaz JJ, Roche C. Mechanisms of local invasion in enteroendocrine tumors: Identification of novel candidate cytoskeleton-associated proteins in an experimental mouse model by a proteomic approach and validation in human tumors. Mol Cell Endocrinol pii: S0303-7207(14)00284-6 (2014).

4.     Catez F., Rousseau A., Labetoulle M., Lomonte P. Detection of persistent DNA virus genome and transcripts in neuronal tissue sections by fluorescent in situ hybridization combined to immuno-staining. (2014). J Vis Exp. Jan 23;(83).

5.     Perriaud L, Marcel V, Sagne C, Favaudon V, Guédin A, De Rache A, Guetta C, Hamon F, Teulade-Fichou MP, Hainaut P, Mergny JL, Hall J. Impact of G-quadruplex structures and intronic polymorphisms rs17878362 and rs1642785 on basal and ionizing radiation-induced expression of alternative p53 transcripts. Carcinogenesis (2014) vol 35(12),2706-2715.

6.     Marcel V, Fernandes K, Terrier O, Lane DP, Bourdon JC. Modulation of p53b and p53g expression by regulating the alternative splicing of TP53 gene modifies cellular response. Cell Death Diff (2014) vol 21(9), 1377-1387.

7.     Durut, N., Abou-Ellail, M., Pontvianne, F., Das, S., Kojima, H., Ukai, S., DeBures, A., Comella, P., Echeverria, M., Bouvet, P., Nakamura, K., J. Sáez-Vásquez.  A duplicated NUCLEOLIN gene with antagonistic activity in Arabidopsis is required for methylation and organization of silent 45S rRNA genes.  The Plant Cell, 2014,26,1330-44.

8.     Shandilya J, Senapati P, Hans F, Menoni H, Bouvet P, Dimitrov S, Angelov D, Kundu TK. Centromeric histone variant CENP-A represses acetylation dependent chromatin transcription that is relieved by histone chaperone NPM1. J Biochem, 2014, 156(4):221-7.

 

CENTRE DE RECHERCHE EN CANCEROLOGIE DE LYON (CRCL)
UMR INSERM 1052 CNRS 5286 - CENTRE LEON BERARD
Copyright 2011. CRCL
SUIVEZ LES ACTUALITES
DU CRCL SUR TWITTER :